組織的非特異性染色的機理很複雜，其產生的原因主要可分爲以下幾點：

（1）一部分熒光素未與蛋白質結合，形成了聚合物和衍化物，而不能被透析除去。

（2）抗體以外的血清蛋白與熒光素結合形成熒光素脲蛋白，可與組織成分結合。

（3）

，可與組織中特異性抗原以外之之相應抗體結合。

（4）從組織中難於提純抗原性物質，所以製備的免疫血清中往往混雜一些抗其他組織成分的抗體，以致容易混淆。

（5）抗體分子上標記的熒光素分子太多，這種過量標記的抗體分子帶過多的陰離子，可吸附於正常組織上而呈現非特異性染色。

（6）熒光素不純，標本固定不當等。

常用肝粉（豬、大白鼠或小白鼠），其次是骨髓粉、鼠腦粉和雞胚粉等。每毫升熒光抗體中加入肝粉50～100mg,在離心管中充分混勻，在室溫中振動2h，4℃中過夜，再攪拌10min，高速離心（3000～15000r/min）30min，1～2次後，即可使用其上清液。吸收一般應在臨用前進行，吸收後之熒光抗體保存冰箱中勿超過2周。染色應作吸收前後之比較，吸收時可先用緩衝鹽水將組織乾粉浸溼，離心（3000～15000r/min）30min，除去上清液，再加入熒光抗體進行吸收，以免消耗過多的抗體。

肝粉或新鮮細胞吸收是一種非特異性的消除方法，對熒光抗體的熒光色素和蛋白都有吸附作用。如檢查組織中的病毒抗原時，也可用相同的組織乾粉或勻漿沉澱物吸收之。

用臟器肝粉吸收對熒光抗體損失較多，如果根據Hiramotos氏等的方法將組織的20%生理鹽水勻漿液，用生理鹽水洗2～3次，12000r/min 10min離心沉澱，用其沉澱物吸收其熒光抗體即能完全達到目的，京極方久氏認爲這樣吸收對熒光抗體幾乎沒有損失，他們常用此法，效果甚佳，吸收後放置一週左右，用時有必要再吸收一次。

【肝粉的製法】

（1）將若干只小白鼠或大白鼠放血殺死，取出肝臟，用生理鹽水洗2～3次，除去血液，剝掉表面的結締組織的脂肪。

（2）剪碎，用生理鹽水反覆洗滌至無血色止，然後再加生理鹽水少許，用組織搗碎機或勻漿器作成勻漿。

（3）將肝勻漿裝入離心管內（1/3左右），交換地用2～3倍量生理鹽水和丙酮反覆洗滌各三次，至上清無血色止，每次完畢先用2000r/min離心沉澱15min後，再除去上清液。

（4）最後用丙酮洗滌肝漿，再用布氏漏斗過濾，或離心沉澱，將沉澱物平鋪在潔淨的玻璃板上，37℃烤乾（過夜）。

（5）在乳鉢中充分研磨，用120目銅篩篩選過後，分裝，密封，低溫乾燥保存。